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CuET 纳米晶体的 HPLC-MS/MS、DLS、TEM 与 XRD 表征及抗焦亡药效评价

知默2026-09-14 16:43:44811 阅读

本研究围绕双硫仑代谢物 CuET 的抗焦亡活性与成药性缺陷,采用金属配位驱动自组装制备 CuET 纳米晶体,并以 HPLC-MS/MS 定量细胞内 CuET 及开展药代动力学与组织分布分析,结合 DLS、TEM、UV-Vis、FTIR、XRD 表征理化性质,在 DSS 诱导结肠炎模型中验证药效。

双硫仑(DSF)经药物重定位被发现具有抗焦亡活性,Cu2+ 可增强该活性,但其机制尚不明确。本研究确认增强作用源于细胞内原位生成铜-二乙基二硫代氨基甲酸酯配合物 CuET,CuET 通过干扰 NLRP3 与 NEK7 的结合特异性抑制 NLRP3 炎症小体组装,抗焦亡活性强于 DSF。由于 CuET 水溶性和渗透性均较差,属 BCS Ⅳ 类药物,研究采用金属配位驱动自组装方法制备 CuET 纳米晶体(CuET NCs),以 HPLC-MS/MS 完成细胞内 CuET 定量、Caco-2 跨膜转运检测、血浆及组织药物浓度测定,以 DLS、TEM、UV-Vis、FTIR、XRD 完成理化表征,最终在 DSS 诱导结肠炎小鼠模型中评价体内药效。

整体证据链由「纳米晶体制备—理化性质确证—细胞水平活性筛选—体内药效验证—口服药代与组织分布」构成:HPLC-MS/MS 在细胞裂解液、转运液、血浆和组织匀浆中定量 CuET,支撑原位生成、渗透性、生物利用度和肠道分布等关键结论;DLS、TEM、UV-Vis、FTIR、XRD 从粒径、形貌、化学配位和晶体结构层面确证纳米晶体的形成。

实验流程

实验环节仪器技术解决问题产生数据
细胞内 CuET 原位生成确认HPLC-MS(1290 Infinity II + 6470 LC/TQ,SIM 模式 m/z 359)Cu2+ 增强 DSF 抗焦亡活性是否源于细胞内生成 CuET不同 Cu2+/DSF 处理下的细胞内 CuET 浓度
成药性评价—溶解度HPLC-UV(1260 Infinity II,433 nm)CuET 在水和有机溶剂中的平衡溶解度及 BCS 分类各介质中平衡溶解度数据
成药性评价—渗透性Caco-2 单层 Transwell + EVOM2 跨膜电阻仪 + HPLC-MS/MSCuET 的跨膜转运能力与转运机制双向 Papp 值、外排比 ER
CuET NCs 制备与产量测定恒流泵滴加 + 乙腈裂解 + HPLC-MS/MS金属配位自组装制备可放大的 CuET 纳米晶体并计算产率实际浓度/理论浓度产率、粒径分布
理化表征DLS(ZS-90)、TEM(Titan G2 60-300)、UV-Vis(UV-2600i)、FTIR(AVATAR360)、XRD(Empyrean 2)粒径、ζ 电位、形貌、配位结构及晶体结构确证粒径与 ζ 电位、TEM 形貌图、吸收光谱、红外光谱、XRD 衍射峰
细胞毒性与抗焦亡活性MTT 法、LDH 释放、ELISA、Western blotCuET NCs 对 NLRP3 炎症小体激活的特异性抑制细胞活力、LDH 释放量、IL-1β/TNF-α/IL-6 水平、GSDMD 剪切条带
机制验证免疫荧光显微镜(Nikon Ti2-U)、免疫共沉淀、Western blot、CD 光谱(J-815)CuET NCs 是否通过干扰 NLRP3-NEK7 结合抑制炎症小体组装ASC 斑点阳性细胞比例、ASC 寡聚化、NLRP3-ASC 与 NEK7-NLRP3 相互作用条带
血浆蛋白结合分析荧光分光光度计(F-2700)、CD 光谱、HPLC-MS/MSCuET 在血浆/BSA 中信号衰减的机制荧光猝灭谱、Stern-Volmer 与双对数回归参数、CD 谱
口服药代与组织分布UPLC-MS/MS(Nexera UHPLC + API 5500 QTrap)CuET NCs 相对 CuET SP 的生物利用度及组织分布血药浓度-时间曲线、AUC0-24、Tmax、T1/2、各组织药物浓度
体内药效—LPS 脓毒症模型红外热成像、ELISA、H&E 染色、光学显微镜CuET NCs 对 LPS 诱导全身炎症和器官损伤的保护作用体温变化、血清 IL-1β/IL-6、肺和肝组织病理
体内药效—DSS 结肠炎模型临床评分、结肠长度测量、Western blot、H&E 染色CuET NCs 对 DSS 诱导结肠炎的治疗效果体重变化、DAI 评分、结肠长度、NLRP3/GSDMD-NT 表达、ASC 寡聚化、结肠病理

关键环节

细胞内 CuET 的原位生成是解释 Cu2+ 增强 DSF 抗焦亡活性的核心证据。实验以原代腹腔巨噬细胞为模型,在 LPS 预处理后加入不同浓度 Cu2+ 与 2 μmol/L DSF,采用冻融联合超声破碎细胞,以四倍体积甲醇沉淀蛋白,离心后取上清进样。HPLC-MS 在正离子模式下以单离子监测 m/z 359 定量 CuET,标准曲线由空白胞浆加标模拟样品处理绘制。数据表明,Cu2+/DSF 组检测到 CuET 且浓度随 Cu2+ 浓度升高而增加,而游离 DSF 组即使达到 30 μmol/L 也未检出 CuET,说明 CuET 在细胞内原位生成,并提示 DSF 与 CuET 的抗焦亡机制存在差异。

成药性评价环节解决 CuET 能否作为候选药物的前置问题。溶解度测定采用试管平衡法,以 HPLC-UV 在 433 nm 检测,显示 CuET 在水和常见有机溶剂中溶解度均较低,属难溶性药物。渗透性评价采用 Caco-2 单层 Transwell 模型,以 EVOM2 监测跨膜电阻确认单层完整性,双向转运样品经 HPLC-MS/MS 测定,计算 Papp 与外排比。结果显示 Papp(AP→BL)小于 1 × 10⁻⁶,ER 约为 1,提示 CuET 为被动转运且渗透性差,综合归类为 BCS Ⅳ 类。该数据为后续采用纳米晶体制剂解决成药性缺陷提供了直接依据。

CuET NCs 的制备与理化表征环节用于确认制剂形成并解释其结构基础。制备以 DTC 与 Cu2+ 按固定摩尔比 2/1 在超纯水中进行,PVP 作为稳定剂,CuCl2 溶液经恒流泵缓慢滴加,全程无需有机溶剂。DLS 测得平均粒径约 90 nm、表面电荷 −4.5 mV;TEM 显示纳米晶体呈不规则无定形形貌,与金属配位聚合物结构一致。UV-Vis 在 443 nm 出现新吸收峰,FTIR 显示 DTC 中 1140 cm⁻¹(vC=S)和 910 cm⁻¹(vC-S)峰在 CuET NCs 中消失,提示 C–S 与 C=S 基团参与 Cu2+ 配位。XRD 在 10.1°、11.9°、12.4°、14.4°、21.4°、24.1° 处出现衍射峰,与标准库中 CuET 化合物的前六个强峰一致,确认纳米晶体的晶态结构。DLS 与 TEM 补充粒径和形貌信息,UV-Vis、FTIR 与 XRD 从化学键和晶体结构层面共同确证 CuET 的原位生成。稳定性实验显示,CuET NCs 在超纯水、生理盐水、小鼠血清和 RPMI 1640 完全培养基中 75 h 内粒径无显著变化,4 °C 水中可稳定储存至少 60 天。

细胞水平抗焦亡活性评价用于判断 CuET NCs 的作用范围。以 LPS 联合 nigericin、ATP、MSU 激活 NLRP3 炎症小体,以转染 LPS 激活非经典炎症小体,以 flagellin 激活 NLRC4,以 poly(da:dT) 激活 AIM2。CuET NCs 在 2 μmol/L 即特异性抑制 NLRP3 炎症小体激活引起的 LDH 释放和 IL-1β 分泌,对 TNF-α 和 IL-6 无显著影响,对其他三类炎症小体无明显作用,Western blot 显示 GSDMD 剪切被完全抑制。人 THP-1 细胞中重复验证了该特异性。与 DSF 需约 30 μmol/L 才发挥显著抑制相比,CuET 在更低剂量起效,提示其抗焦亡活性更强且机制不同。

机制验证环节围绕 NLRP3 炎症小体组装的上游事件展开。免疫荧光显示 CuET NCs 显著降低 ATP 或 nigericin 刺激下含 ASC 斑点的细胞比例,交联实验进一步显示 ASC 寡聚化被抑制。免疫共沉淀与 Western blot 表明,CuET NCs 抑制 NLRP3 与 ASC 的相互作用,并破坏 NLRP3 与 NEK7 的结合,据此将 CuET NCs 的作用位点定位在 NLRP3 炎症小体组装阶段。

血浆蛋白结合分析解释了 CuET 在生物基质中信号衰减的原因。CuET 在血浆或 BSA 中随时间逐渐降低,而在水中稳定。荧光猝灭实验显示 BSA 荧光随 CuET 浓度升高而降低且发射波长无明显位移,Stern-Volmer 曲线线性良好,Kq 超过生物大分子最大扩散常数,提示以静态猝灭为主。双对数回归得到结合常数 Ka 在 298 K 和 310 K 分别为 (1.37 ± 0.39) × 10⁴ 和 (5.38 ± 2.76) × 10⁴ L/mol,结合位点数约 0.81~1.02。CD 光谱显示 CuET 使 BSA 的 α-螺旋结构部分展开。基于上述结果,CuET 检测方法在盐冰浴条件下建立,以降低生物基质干扰。

口服药代与组织分布环节以 UPLC-MS/MS 完成血浆和组织样品定量。SD 大鼠单次口服 60 mg/kg CuET NCs 或 CuET SP,血浆样品经冰冷乙腈沉淀蛋白后分析,组织样品在液氮中速冻后以冰冷丙酮匀浆。结果显示 CuET NCs 的 AUC0-24 为 CuET SP 的 6 倍,Tmax 为 4.67 ± 0.94 h,T1/2 为 8.51 ± 1.68 h。组织分布显示 CuET 主要分布于胃、肠、脂肪组织和骨骼肌,并在这些组织中至少维持 12 h,而肝、肾浓度较低。肠道高分布结果为选择 DSS 诱导结肠炎模型提供了依据。

体内药效评价包含 LPS 脓毒症模型和 DSS 结肠炎模型。LPS 模型中,CuET NCs 减轻体温下降、降低血清 IL-1β 水平约 47%~60%,IL-6 未受影响,并改善肺和肝组织病理改变。DSS 结肠炎模型中,每日记录体重、粪便性状和便血以计算 DAI,第 8 天测量结肠长度,并检测结肠组织 NLRP3、GSDMD-NT 表达和 ASC 寡聚化,同时进行 H&E 染色。CuET NCs 治疗改善体重下降和 DAI 评分,恢复结肠长度,降低 NLRP3 与 GSDMD-NT 表达,抑制 ASC 斑点形成,并减轻黏膜损伤和单核细胞浸润。这些结果与体外机制数据相互印证,构成从分子、细胞到整体的药效证据链。

技术协同

关系类型涉及仪器/技术关系说明
定量支撑HPLC-MS、HPLC-MS/MS、HPLC-UVHPLC-MS 确认细胞内 CuET 原位生成,HPLC-UV 完成溶解度测定,HPLC-MS/MS 承担转运、药代和组织分布定量,共同支撑成药性、生物利用度和分布结论
结构确证互补UV-Vis、FTIR、XRDUV-Vis 提供配位后新吸收峰,FTIR 显示 C–S 和 C=S 参与配位,XRD 确证晶态结构,三者从电子跃迁、官能团和晶体结构层面互相补证
粒径与形貌互补DLS、TEMDLS 给出平均粒径和 ζ 电位,TEM 给出形貌和分散状态,二者共同描述纳米晶体的物理特征
机制验证免疫荧光、免疫共沉淀、Western blot免疫荧光观察 ASC 斑点,免疫共沉淀检测蛋白相互作用,Western blot 定量 NLRP3、GSDMD-NT 和 ASC 寡聚化,形成组装的逐级证据
体内外衔接药代动力学、组织分布、DSS 结肠炎模型药代与分布数据说明肠道暴露量,为选择 IBD 模型提供依据;模型药效与体外机制数据相互印证

研究组合

研究目标可参考仪器组合组合价值
确认候选药物的体内原位生成细胞裂解液前处理 + HPLC-MS(SIM 模式)以标准曲线加标定量细胞内药物浓度,判断活性增强是否由代谢配合物生成所致,前提是具备目标物的特征离子和可用的空白基质
评价难溶性候选药物的成药性HPLC-UV + Caco-2 Transwell + EVOM2 + HPLC-MS/MS分别获得平衡溶解度和双向渗透性数据,支撑 BCS 分类,适用于早期成药性筛查;结果需结合具体介质和细胞模型判断
确证金属配合物纳米晶体的形成DLS + TEM + UV-Vis + FTIR + XRD从粒径、形貌、配位化学和晶体结构多角度确证纳米晶体,适用于金属配位自组装体系的表征,前提是具备对应的标准谱库或参比物
评价抗炎或抗焦亡药物的体内药效LPS 脓毒症模型或 DSS 结肠炎模型 + ELISA + Western blot + H&E 染色以体温、细胞因子、炎症小体相关蛋白和病理改变构成药效终点,适合 NLRP3 相关疾病的药效验证,需要依据药物分布特征选择模型
开展口服药代与组织分布研究UPLC-MS/MS + 系列时间点采血 + 组织匀浆获得 AUC、Tmax、T1/2 和组织浓度数据,为制剂优化和适应症选择提供依据,需要控制样品采集与处理时间以减少基质干扰

文献信息

Xueming Xu, Yuanfeng Han, Jiali Deng, Shengfeng Wang, Shijie Zhuo, Kai Zhao, Wenhu Zhou. Repurposing disulfiram with CuET nanocrystals: Enhancing anti-pyroptotic effect through NLRP3 inflammasome inhibition for treating inflammatory bowel diseases. Acta Pharm Sin B, 2024. PMID: 38828135. DOI: 10.1016/j.apsb.2024.03.003.